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    胰蛋白酶的制備及活力的測定(2)

    2020.9.07

    三、儀器

    食品加工機和高速分散器;研缽;大玻璃漏斗;布氏漏斗;抽濾瓶;紗布;恒溫水浴;紫外分光光度計;秒表;pH試紙。

    操作方法

    一、豬胰蛋白酶制備

    (一)豬胰蛋白酶原的提取
    豬胰臟1.0Kg(新鮮的或殺后立即冷藏的),除去脂肪和結締組織后,絞碎。
    加入2倍體積預冷的乙酸酸化水(pH2.5)于10~15℃攪拌提取24小時,四層紗

    布過濾得乳白色濾液,用2.5M H2SO4調pH至2.5~3.0,放置3~4小時后用折迭濾紙過濾得黃色透明濾液(約1.5升)。
    加入固體硫酸銨(予先研細),使溶液達0.75飽和度(每升濾液加492克)放置過

    夜后抽濾(擠壓干),得豬胰蛋白酶原粗制品。

    (二)胰蛋白酶原激活
    向胰蛋白酶原粗制品濾餅分次加入10倍體積(按餅重計)冷的蒸餾水,使濾餅溶

    解,得胰蛋白酶原溶液。將研細的固體無水氯化鈣慢慢加入酶原溶液中(濾餅中硫酸銨的含量按餅重的四分之一計),使 Ca2+與SO42-結合后,邊加邊攪拌均勻,邊加邊攪拌,使溶液中最終仍含有0.1M CaCl2。

    2.用5M NaOH調pH至8.0,加入極少量豬胰蛋白酶(約2-5mg)輕輕攪拌,于室溫下活化8~10小時,(2~3小時取樣一次,并用0.001M HCl稀釋),測定酶活性增加的情況。


    3.活化完成(比活約3500~4000BAEE單位)后,用2.5M H2SO4調pH至2.5~3.0,抽濾除去CaSO4沉淀。

    (三)胰蛋白酶的分離

    1.將已激活的胰蛋白酶溶液按242克/升加入細粉狀固體硫酸銨,使溶液達到0.4飽和度,放置數小時后,抽濾,棄去濾餅。

    2.濾液按250克/升加入研細的硫酸銨,使溶液飽度達到0.75,放置數小時,抽濾,棄去濾液。

    (四)胰蛋白酶的結晶

    1.將上述胰蛋白酶濾餅(粗胰蛋白酶)溶解后進行結晶:按每克濾餅溶于1.0ml pH9.0 的0.4M硼酸緩沖液的量計加入緩沖液,小心攪拌溶解。

    2.用2M NaOH調pH至8.0,注意要小心調節,偏酸不易結晶,偏堿易失活,存放于冰箱。3.放置數小時后,應出現大量絮狀物,溶液逐漸變稠呈膠態,再加入總體積的1/4~1/5的pH8.0的0.2M硼酸緩沖液,使膠態分散,必要時加入少許胰蛋白酶晶體。

    4.放置2~5天可得到大量胰蛋白酶結晶,待結晶析出完全時,抽濾,母液回收。
    (五)胰蛋白酶的重結晶

    將第一次結晶的胰蛋白酶產物進行重結晶:用約1倍的0.025M HCl,使上述結晶分散,加入約1.0~1.5倍體積的pH9.0 的0.8M硼酸緩沖液,至結晶酶全部溶解,取樣后,用2M NaOH調溶液pH至8.0(準確)(體積過大,很難結晶),冰箱放置1~2天,可將大量結晶抽濾得第二次結晶產物(母液回收),冰凍干燥后得重結晶的豬胰蛋白酶。

    二、胰蛋白酶活性的測定

    以苯甲酰L—精氨酸乙酯(英文縮寫為BAEE)為底物,用紫外吸收法進行測定。苯甲酰L—精氨酸乙酯在波長 253nm下的紫外吸收遠遠弱于苯甲酰L—精氨酸(英文縮寫為BA)。在胰蛋白酶的催化下,隨著酯鍵的水解,苯甲酰L—精氨酸逐漸增多,反應體系的紫外吸收宜隨之相應增加。

    取2個光程為1厘米的帶蓋石英比色杯,分別加入25℃予熱過的2.8ml底物溶液。向一只比色杯中加入0.2ml 0.001mol/L HCl,作為空白,校正儀器的253nm處光吸收零點。再在另一比色杯中加入0.2ml待測酶液(用量一般為10微克結晶的胰蛋白酶),立即混勻并記時,每半分鐘讀數一次,共讀3~4分鐘。控制DA253/min 在0.05 ~ 0.100左右為宜。

    繪制酶促反應動力學曲線,從曲線上求出反應起始點吸光度隨時間的變化率(即初速度)DA253/min。

    胰蛋白酶活力單位的定義規定為:以BAEE為底物反應液pH8.0,25℃,反應體積3.0ml,光徑1厘米的條件下,測定DA253,每分鐘使DA253增加0.001,反應液中所加入的酶量為一BAEE單位。

    胰蛋白酶溶液的活力單位(BAEE單位/ mL)=

    胰蛋白酶比活力(BAEE單位 / mg )=

    注意事項

    (1)胰臟必需是剛屠宰的新鮮組織或立即低溫存放的,否則可能因組織自溶而導致實驗失敗。

    (2)在室溫14~20℃條件下8~12小時可激活完全,激活時間過長,因酶本身自溶而會使比活降低,比活性達到 “3000~4000BAEE單位/mg蛋白”時即可停止激活。

    (3)要想獲得胰蛋白酶結晶,在進行結晶時應十分細心地按規定條件操作,切勿粗心大意,前幾步的分離純化效果愈好,則培養結晶也較容易,因此每一步操作都要嚴格。酶蛋白溶液過稀難形成結晶,過濃則易形成無定形沉淀析出,因此,必需恰到好處,一般來說待結晶的溶液開始時應略呈微渾濁狀態。

    (4)過酸或過堿都會影響結晶的形成及酶活力變化,必須嚴格控制PH。

    (5)第一次結晶時,3~5天后仍然無結晶,應檢查pH,必要時調整pH或接種,促使結晶形成。重結晶時間要短些。


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