骨髓基質干細胞的誘導分化
骨髓基質干細胞的誘導分化 1.成軟骨誘導骨髓基質干細胞培養7天后,加入軟骨誘導液,誘導因子終濃度為TGF-p1 10ng/m1、IGFl00ng/m1、地塞米松0.1/1m01/L,轉鐵蛋白6.25ug/ml,誘導時間為2-4周。 2.成骨誘導(1)骨髓基質干細胞培養7天后,加入成骨誘導液。誘導液成分為基礎培養液加入10mmo]/Lβ-磷酸甘油、10nmol/L維生素D3等誘導成分。(2)特殊染色vonKossa染色:誘導4周,4%多聚甲醛室溫固定30rain,蒸餾水沖洗,加入1%(W/V)硝酸銀溶液,避光30min,加入0.1mmol/L硫代硫酸鈉1h,蒸餾水沖洗,干燥封片。礦化結節呈現黑色。設誘導組、非誘導組、檸檬酸處理組。此方法用于特異性檢測鈣化結節形成能力。AlizarnRed染色:誘導3~4周,4%多聚甲醛室溫固定30min,蒸餾水沖洗,加入0.1%AlizarnRed-Tris-HCL溶液(pH 8.3),室溫10min。蒸餾水沖洗,干燥封片。鈣鹽沉積處呈紅色。 3.成脂肪誘導(1)骨髓基質干細胞培養7天后,吸去培養液,PBS輕輕沖洗后,加入成脂肪誘導液,其成分為基礎培養液和0.5mmol/LIBMX、1umol/L地塞米松、10umol/L胰島素、200/~mol/L吲哚美辛等,每4天更換培養液。倒置顯微鏡觀察細胞形態的變化(有無脂滴形成)。(2)特殊染色油紅染色:誘導2-3周進行油紅染色,以觀察細胞脂滴形成情況。染色前,細胞經4%甲醛4~C固定1h,70%異丙醇清洗,2%油紅試劑室溫放置5-10min,?0%異丙醇洗去多余的染料,蒸餾水洗滌,蘇木精染色2rain。染色過程中,細胞絕對不要脫離液體環境超過30s,否則實驗很難成功。