動物實驗基本操作之九“處死方法”
當實驗中途停止或結束時,實驗者應站在實驗動物的立場上以人道的原則去處置動物,原則上不給實驗動物任何恐怖和痛苦,也就是要施行安樂死。安樂死是指實驗動物在沒有痛苦感覺的情況下死去。實驗動物安樂死方法的選擇取決于動物的種類與研究的課題。
一、蛙類
常用金屬探針插入枕骨大孔,破壞腦脊髓的方法處死。將蛙用濕布包住,露出頭部,左手執蛙,并用食指按壓其頭部前端,拇指按壓背部,使頭前俯;右手持探針由凹陷處垂直刺入,刺破皮膚即入枕骨大孔。這時將探針尖端轉向頭方,向前深入顱腔,然后向各方攪動,以搗毀腦組織。
再把探針由枕骨大孔刺入并轉向尾方,刺入椎管,以破壞脊髓。腦和脊髓是否完全破壞,可檢查動物四肢肌肉的緊張性是否完全消失。拔出探針后,用一小干棉球將針孔堵住,以防止出血。操作過程中要防止毒腺分泌物射入實驗者眼內。如被射入時,則需立即用生理鹽水沖洗眼睛。
二、大鼠和小鼠
1 、頸椎脫臼法
右手抓住鼠尾用力向后拉,同時左手拇指與食指用力向下按住鼠頭。將脊髓與腦髓拉斷,鼠便立即死亡。
2、斷頭法
用剪刀在鼠頸部將鼠頭剪掉,鼠立即死亡。
3、擊打法
右手抓住鼠尾提起,用力摔擊其頭部,鼠痙攣后立即死去。或用木錘用力擊打鼠頭部也可致死。
4、 急性大出血法
可采用鼠眼眶動脈和靜脈急性大量失血方法使鼠立即死亡。
5、. 藥物致死法
吸入一定量的一氧化碳、乙醚、氯仿等均可使動物致死。
三、狗、兔、豚鼠
1 、空氣栓塞法
向動物靜脈內注入一定量的空氣,使之發生栓塞而死。當空氣注入靜脈后,可在右心隨著心臟的跳動使空氣與血液成泡沫狀,隨血液循環到全身。如進到肺動脈,可阻塞其分支,進入心臟冠狀動脈,造成冠狀動脈阻塞,發生嚴重的血液循環障礙,動物很快致死。一般兔、貓等靜脈內注入20~40ml空氣即可致死。每條狗由前肢或后肢皮下靜脈注入80~150ml空氣,可很快致死。
2、急性失血法
先使動物輕度麻醉,如狗可按每公斤體重靜脈注射硫噴妥納20~30mg,動物即很快入睡。暴露股三角區,用鋒利的殺狗刀在股三角區作一個約10cm的橫切口,把股動、靜脈全切斷,立即噴出血液。
用一塊濕紗布不斷擦去股動脈切周圍處的血液和血凝塊,同時不斷的用自來水沖洗流血,使股動脈切口處保持暢通,動物3~5分鐘內即可致死。采用此種方法,動物十分安靜,對臟器無損傷,對活殺采集病理切片標本是一種較好的方法。
3、 破壞延腦法
如果急性實驗后,腦已暴露,可用器具將延髓破壞,導致動物死亡。對家兔也可用木錘用力錘擊其后腦部,損壞延腦,造成死亡。
4 、開放性氣胸法
將動物開胸,造成開放性氣胸。這時胸膜腔的壓力與大氣壓力相等,肺臟因受大氣壓縮發生肺萎陷,縱隔擺動,動物窒息而死。
5、化學藥物致死法
靜脈內注入一定量的氯化鉀溶液,使動物心肌失去收縮能力,心臟急性擴張,致心臟馳緩性停跳而死亡。每條成年兔由兔耳緣靜脈注入10%氯化鉀溶液5~10ml;每條成年狗由狗前肢或后肢下靜脈注入20~30ml。即可致死。
靜脈內注入一定量的福爾馬林溶液,使血液內蛋白凝固,動物由于全身血液循環嚴重障礙和缺氧而死。每條成年狗靜脈注入10%福爾馬林溶液20ml即可致死。也可將福爾馬林與酒精按一定比例配成動物致死液應用。