考馬斯亮藍法測蛋白含量:藥品的配制
Bradford法檢測蛋白濃度專題
一、藥品的配制步驟
(一)、實驗準備:
1、 準備所需的藥品和玻璃儀器。
2、 洗滌。(怎樣洗滌算干凈?)
(二)、計算:
1、百分比濃度計算:
1)、G/V比
例如配1% NaCl,稱1g NaCl溶于100ml 水。
2)、V/V比:
例如配75%乙醇100ml,75%×100%=100%×X, X=75ml。取75ml無水乙醇,加25ml蒸餾水。
乙醇:乙醚:丙酮=2:1:2配500ml,各取200 ml,100 ml,200 ml混合。
3)G/V比:用的較少,如計算灰分中某種元素如Fe的含量。
2、摩爾濃度計算:注:藥品的分子 量一般在標簽中注明。
1)、0.1M或0.1mol/L NaCl配100ml。
M=質量/體積(L)稱取NaCl0.1×0.1×40=0.4g 摩爾數=G(g)/摩爾質量
2)、0.1mMNaCl配100ml
mM=毫摩爾數/體積(L) 稱取NaCl0.1×0.1×40=0.4g
毫摩爾數=G(mg)/摩爾質量
3)、0.1uNaCl配100ml
mM=微摩爾數/體積(L) 稱取NaCl0.1×0.1×40=0.4mg
微摩爾數=G(ug)/摩爾質量 稱取NaCl0.1×0.1×40=0.4ug
3、 混合溶液配制的計算:
如配3uMEDTA ,2.25mM NBT以及60uM 溶液100ml,用50mM磷酸緩沖液配制。
注意:1、分別標定體積計算
2、分別配制再混合,但總體積不能 為100ml
(三)、標量:
1、根據需要選擇不同量程的天平根據要求去不同精度的測量器,如量筒或移液管。
2、電子分析天平的使用。
(四)、溶解:
1、根據藥品配置要求選擇溶劑。蒸餾水,雙蒸水,無離子水等。
2、只能用燒杯溶解。注意加入溶劑只能加入總體積的2/3左右,剩余溶劑洗滌燒杯三次左右,直到洗滌干凈。
小常識:藥品標簽中一般標識有藥品的溶解性能和分子 式,可根據分子式和所學的常識判斷藥品的結構和性質特點(包括溶解性質)。
如酸堿兩性物質的配制(AA、蛋白質、核苷酸 等)如果溶解性能不好可以用稀酸或稀堿促進溶解,但pH應在被要求的范圍內。
3、加熱促進溶解,但注意應在配制的范圍內有的藥品還需水溶加熱較好。如:配0.1%的淀粉,水裕加熱(溫度在80-90。C),過量會糊化。
(五)、定容:
1、用容量瓶定容;
2、用玻璃棒引流或用小漏斗;
3、用溶劑加入到接近刻度,然后用滴管加入到刻度。要求刻度與液體凹面相切為止(眼睛可視);
4、上下窯洞容量瓶幾次,混合均勻即可。(注意不再定容了,防止溶液漏掉。)
(六)、裝入試劑瓶,貼上標簽。
標簽應注明以下內容:藥品濃度、名稱、配制人、配制日期等。
(七)、清理實驗場所。
二、磷酸緩沖液 的配制。
(一)、配制0.2mol/L即0.2M pH=6.8的磷酸緩沖液。用磷酸氫二鈉—磷酸二氫鈉做緩沖液。
選用藥品:Na2HPO4·12H2O(堿)和NaH2PO4·12H2O(酸)配緩沖液100ml。書中說明。
(二)、計算 :
1、注:書中有注明配置的量。
2、計算:Na2HPO4·12H2O稱取71.64×0.1=7.164g
NaH2PO4·12H2O稱取 31.21×0.1=3.121g
3、含有不同結晶水的換算。
書中配1/15mol/L的緩沖液配1L,書中用Na2HPO4·2H2O需要11.87g/L但用Na2HPO4·12H2O需多少g?
11.87=(178/358)×X,X=23.87g。
(三)、分別配制緩沖液各100ml(根據需要確定配制的量)。
即:0.2M Na2HPO4·2H2O和NaH2PO4·2H2O100ml。
(四)、按書中的量配制取量再混合。
如:pH=6.8,分別去緩沖對49ml和51ml。
(五)、用pH試紙ceni索賠的緩沖液的pH值,檢測配置是否準確。
(六)如配50mM pH =6.8的緩沖液100ml ,以你配制的母液稀釋即可。
計算:50×0.1=0.2×1000×X (L);X =0.025L;
取0.2M pH=7.2的緩沖液25ml,用蒸餾水定容至100ml即可。