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  • 實驗方法> 蛋白質技術> SDS-PAGE>表達蛋白的SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳分析

    表達蛋白的SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳分析

    關鍵詞: 表達蛋白 SDS 聚丙烯酰胺 凝膠電泳分析來源: 互聯網

    一、原理

    細菌體中含有大量蛋白質,具有不同的電荷和分子量。強陰離子去污劑SDS與某一還原劑并用,通過加熱使蛋白質解離,大量的SDS結合蛋白質,使其帶相同密度的負電荷,在聚丙烯酰胺凝膠電泳(PAGE)上,不同蛋白質的遷移率僅取決于分子量。采用考馬斯亮蘭快速染色,可及時觀察電泳分離效果。因而根據預計表達蛋白的分子量,可篩選陽性表達的重組體。

    二、試劑準備

    1、30%儲備膠溶液:丙烯酰胺(Acr)29.0g,亞甲雙丙烯酰胺(Bis)1.0g,混勻后加ddH2O,37℃溶解,定容至100ml,棕色瓶存于室溫。

    2、1.5M Tris-HCl(pH 8.0):Tris 18.17g加ddH2O溶解,濃鹽酸調pH至8.0,定容至100ml。

    3、1M Tris-HCl(pH 6.8):Tris 12.11 g加ddH2O溶解,濃鹽酸調pH至6.8,定容至100ml。

    4、10% SDS:電泳級SDS 10.0 g加ddH2O 68℃助溶,濃鹽酸調至pH 7.2,定容至100ml。

    5、10′電泳緩沖液(pH 8.3):Tris 3.02 g,甘氨酸18.8 g,10% SDS 10ml加ddH2O溶解,定容至100ml。

    6、10%過硫酸銨(AP): 1gAP加ddH2O至10ml。

    7、2′SDS電泳上樣緩沖液:1M Tris-HCl (pH 6.8)2.5ml,b-巰基乙醇1.0ml,SDS 0.6 g,甘油2.0ml,0.1%溴酚蘭1.0ml,ddH2O 3.5ml。

    8、考馬斯亮蘭染色液:考馬斯亮蘭0.25 g,甲醇225ml,冰醋酸46ml,ddH2O 225ml。

    9、脫色液:甲醇、冰醋酸、ddH2O以3∶1∶6配制而成。

    二、操作步驟

    采用垂直式電泳槽裝置

    (一)聚丙烯酰胺凝膠的配制

    1、分離膠(10%)的配制:

    ddH2O 4.0ml

    30%儲備膠3.3ml

    1.5M Tris-HCl2.5ml

    10% SDS 0.1ml

    10% AP 0.1ml

    取1ml上述混合液,加TEMED(N,N,N’,N’-四甲基乙二胺)10μl封底,余加TEMED 4μl ,混勻后灌入玻璃板間,以水封頂,注意使液面平。(凝膠完全聚合需30-60min)

    2、積層膠(4%)的配制:

    ddH2O1.4 ml

    30%儲備膠0.33 ml

    1M Tris-HCl0.25 ml

    10%SDS 0.02 ml

    10%AP 0.02 ml

    TEMED 2 μl

    將分離膠上的水倒去,加入上述混合液,立即將梳子插入玻璃板間,完全聚合需15-30min。

    (二)樣品處理:將樣品加入等量的2×SDS上樣緩沖液,100℃加熱3-5min,離心12000g×1min,取上清作SDS-PAGE分析,同時將SDS低分子量蛋白標準品作平行處理。

    (三)上樣: 取10μl誘導與未誘導的處理后的樣品加入樣品池中,并加入20μl低分子量蛋白標準品作對照。

    (三)電泳:在電泳槽中加入1′電泳緩沖液,連接電源,負極在上,正極在下,電泳時,積層膠電壓60V,分離膠電壓100V,電泳至溴酚蘭行至電泳槽下端停止(約需3hr)。

    (四)染色:將膠從玻璃板中取出,考馬斯亮蘭染色液染色,室溫4-6hr。

    (五)脫色:將膠從染色液中取出,放入脫色液中,多次脫色至蛋白帶清晰。

    (六)凝膠攝像和保存:在圖像處理系統下將脫色好的凝膠攝像,結果存于軟盤中,凝膠可保存于雙蒸水中或7%乙酸溶液中。

    三、注意事項

    1、實驗組與對照組所加總蛋白含量要相等。

    2、為達到較好的凝膠聚合效果,緩沖液的pH值要準確,10%AP在一周內使用。室溫較低時,TEMED的量可加倍。

    3、未聚合的丙烯酰胺和亞甲雙丙烯酰胺具有神經毒性,可通過皮膚和呼吸道吸收,應注意防護。

    推薦方法

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