特異性細胞免疫是由T細胞介導的，因此，細胞免疫檢測通常是檢查T細胞的數量、功能及其產物如細胞因子等，是了解機體細胞免疫狀態的重要手段。 一、淋巴細胞的分離 細胞免疫檢測首先要從人或動物血液及組織中分離出活的淋巴細胞。分離淋巴細胞的方法有多種，目前常用Ficoll密度梯度離心法直接分離外周血單個核細胞。 分離人外周血單個核細胞（PBMC）的分層液是比重1.077±0.001的聚蔗糖(Ficoll)-泛影葡胺(Urografin)(F/H)分層液。紅細胞、粒細胞比重大，離心后沉于管底；淋巴細胞和單核細胞的比重小于或等于分層液比重，離心后漂浮于分層液的液面上，也可有少部分細胞懸浮在分層液中。吸取分層液液面的細胞，就可從外周血中分離到單個核細胞。 【 材料 】肝素抗凝人血、淋巴細胞分層液、無Ca 2+ 、Mg 2+ Hanks液、離心管、試管、吸管、毛細管、白細胞計數板。 【 方法 】 （1）采取新鮮靜脈血2ml，加入含0.1ml肝素（50單位）的試管中，加2mlHanks液混勻。 （2）用滴管將稀釋過的血液沿管壁緩慢加入2ml細胞分層液的液面上（分層液與稀釋血液體積比例為1：2），注意兩者不能混合，保持界面清楚，用水平離心機以2000轉/分，離心20分鐘，離心完，可見紅細胞沉降至最下層，上層為血漿，中層為分層液，血漿與分層液的界面有一比較清楚的乳白色淋巴細胞和單核細胞層 （見圖4-1）。用毛細滴管吸取該層，置含有1滴肝素及5倍以上體積無Ca 2+ 、Mg 2+ Hanks液的試管中，以2000轉/分離心10分鐘，棄上清液后，以同樣試液再洗滌一次。 （3）盡量吸去上清液，將沉于管底的細胞沉積塊搖散，加Hanks液至1ml作細胞計數，用Hanks液配成2×106細胞/ml的細胞懸液。

二、E花環形成試驗（erythrocytc rosette forming test） 人類T淋巴細胞表面CD2分子是綿羊紅細胞（SRBC）受體，也稱E受體，在一定條件下，SRBC環繞T細胞與之結合，形成花環狀，稱E花環（E-rosette），形成此種花環的細胞稱E花環形成細胞（簡稱E-RFC）。 E花環試驗可用作人外周T細胞的分離與鑒定。 【 材料 】淋巴細胞懸液、1%SRBC懸液、滅活之小牛血清、離心管、試管、吸管、載玻片、0.8%戊二醛、瑞氏染液。 【方法】 （1）取上述配好之淋巴細胞懸液0.1ml于潔凈小試管中，加入1%SRBC懸液0.1ml。再加入小牛血清0.1ml，混勻，置37℃水浴箱中5分鐘，500轉/分，離心5分鐘，放4℃冰箱2-24小時。 （2）從冰箱中取出試管，留適量上清液，輕輕搖勻，加0.8%戊二醛2滴，輕搖后，置4℃冰箱15分鐘，取出，作成涂片，待自然干燥，以瑞氏染液染色。 （3）計數：鏡下觀察，凡結合三個以上SRBC的T細胞即為E-RFC，計數200個淋巴細胞，求出E-RFC占淋巴細胞總數的百分率。 【 結果 】 一般認為E-RFC的正常值在60％以上，如少于50％則為低下。如欲分離T細胞，可用密度梯度離心，E-RFC因比重增大而沉于管底，與其他細胞分離；用低滲法裂解花結中的SRBC，即可獲得純化的T細胞。 三、淋巴細胞轉化試驗（微量全血法 ） T細胞在體外培養時，當受到非特異性的有絲分裂原（PHA）刺激后可轉化為淋巴母細胞，并進行有絲分裂，轉化的淋巴母細胞，在形態上出現了幼稚化，光鏡下很容易識別，可通過淋巴細胞轉化率反映機體T細胞免疫功能。此試驗也可用3H-TdR摻入法或MTT法定量檢測。