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    RNA提取與純化

    2019.4.23

    實驗概要

    掌握RNA提取的基本技術,了解RNA提取過程中的各種注意事項。

    實驗原理

    RNA提取是分子生物學實驗中難度較大的實驗技術。
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    RNA提取和DNA提取有類似的地方,因為它們都是核酸,都具有較好的水溶性。提取RNA首先破碎細胞,然后用提取液將RNA溶出,反復抽提去除蛋白質,加入乙醇沉淀RNA,將RNA沉淀溶解備用。那么如何區分DNA和RNA分開?DNA和RNA的溶解性不同,DNA在1M的鹽溶液中具有最好的溶解度,而RNA在0.14M的鹽溶液中具有最好的溶解度,所以可以利用它們的溶解性將它們進行區分。另外,RNA的分子量一般比較小,而DNA分子很大且和蛋白結合成復合體,所以DNA更容易隨蛋白沉淀,而RNA具有較好的溶解性。
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    RNA提取的另一個關鍵問題就是如何抑制或去除環境中RNA酶。所有的玻璃、陶瓷和鐵器具在180℃×6 h以上。所有的塑料器皿用0.1%的DEPC水37℃過夜浸泡,然后濕熱滅菌80℃烘干備用。配制溶液所需的水也要用DEPC處理過的水,而配置Tris相關的緩沖液時Tris會與DEPC發生反應,應避免用DEPC處理。另外操作過程中應戴手套。
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    判斷RNA 的質量主要有兩個標準,一是純度,二是完整性(是否被降解)。RNA的純度可以通過分光光度計進行測定的A260/A280值來判斷。RNA的完整性主要通過電泳分析來闡明,未降解的總RNA電泳時在凝膠中會出現18S和28SrRNA對應的條帶(如果有DNA污染則在RNA后會發現基因組DNA對應的條帶)。RNA電泳系統也要嚴格對RNA酶進行處理。如果用普通瓊脂糖凝膠電泳,則用盡量減少電泳時間。

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    主要試劑

    1、暗培養7天的小麥苗,用前光照誘導3 h

    2、DEPC

    3、DEPC處理的ddH2O

    4、RNA提取液:(每1000毫升中含有)?

    ? ? Tris ? 6.06 克? ?(最終濃度為50 mM )

    ? ? ? LiCl ?6.03 克 (LiCl -H2O 9.06克)(最終濃度為150 mM )

    ? ? ? EDTA(0.5 M) ?10 毫升? ?(最終濃度為5 mM )

    ? ? ? SDS ? ? ? ? ? ? 50 克(最終濃度為5 % )

    5、8 MLi Cl:33.92克Li Cl 溶于100 ml DEPC處理的ddH2O

    6、水飽和酚

    7、氯仿

    8、0.5M NaCl

    9、溴乙啶(EB): 10mg/ml溴乙啶。 注意:該試劑具致癌作用,用時要小心。

    10、點樣緩沖液Loading buffer(10×):0.25%溴酚藍,40%甘油。

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    主要設備

    1、分光光度計

    2、電泳儀

    3、臺式離心機

    4、手提式紫外監測儀

    5、恒溫水浴

    6、凝膠成像系統

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    實驗材料

    暗培養7天的小麥苗,用前光照誘導3 h

    實驗步驟

    1、取植物葉片1-3克,放在液氮中磨成粉末。(可以多研磨一些,然后分裝,小量提取試劑量可減至1/10)

    2、液氮揮發完之前,倒入含有10 毫升RNA提取液的離心管中,迅速反復倒置混勻,直至看不見任何團狀物為止。

    3、立即加入10毫升的等體積(酸性)酚/氯仿,劇烈(!)反復倒置混勻5至10min(如在震蕩器上震蕩,要確保混勻而不能僅僅是振動!)。

    4、13000g×5min,吸管取上清(注意避免吸取界面上的蛋白)。

    5、重復步驟3和4,三次左右(注意觀察界面上白色物質)。

    6、取上清,加入等體積的氯仿,反復倒置混勻2-5min。

    7、13000g×5min。

    8、取上清,加入1/3體積8 M 的 LiCl (即8 M LiCl應占最后體積的25%), 沉淀RNA,4℃過夜。

    9、離心13000g × 10 min。

    10、棄上清,保留沉淀(此時應把RNA沉淀轉入Eppendorf管中,以便于操作), 加入70%無水乙醇 30% 0.5 M NaCl 的混合液0.5 毫升洗滌沉淀數分鐘(和緩地反復倒置混勻),離心 (13000g × 2 min)。重復洗滌沉淀數次。

    11、用70%乙醇再洗滌2次沉淀,去掉鹽離子。

    12、用槍頭吸去殘留的液體,真空干燥2min。

    13、加入200 ul DEPC 處理過的水溶解RNA。

    14、取用5 ul電泳檢測RNA完整性, ?用TEB 緩沖液, 200V× 20-30min。

    15、取5 ul稀釋40倍測定RNA純度和濃度,A260 nm /A280 nm應在 2.0 左右。

    16、將RNA 分裝,放在-70℃長期保存備用.

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    注意事項

    輔助方案:試劑盒提取法(Trizol)

    (一)試劑:

    ? ? 1.Ttizol Reagent?

    2.氯仿

    3.異丙醇

    4.70%無水乙醇

    5.DEPC ?

    (二)器材:

    1、研缽

    2、離心機

    (三)實驗步驟

    1、稱取小麥葉片50-100mg,于研缽中加液氮研磨成粉末,迅速轉移到1.5ml離心管中。

    2、加入1 ml Trizol ?Reagent,15~30℃×5min。 ?

    3、加入0.2ml氯仿,劇烈振蕩15 sec,15~30℃×3min。

    4、冷凍離心12 000 rpm×15min。

    5、將上清液轉移到另一個離心管中,加0.5ml預冷異丙醇,混勻 ,-20℃放置20min。

    6、冷凍離心12 000 rpm×10min。

    7、加入0.5ml 70% 乙醇洗RNA沉淀,懸浮,7500 rpm×2min,除去乙醇。

    8、加入30 ul DEPC 處理過的ddH2O溶解RNA。


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