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    天然產物中多糖的分離、純化與鑒定(2)

    2020.9.07

    二、粗多糖的純化
    粗多糖溶液加入Sevag試劑(氯仿:正丁醇=3:1混合搖勻)后,置恒溫振蕩器中震蕩過夜,使蛋白質充分沉淀,離心(3000r/min)分離,去除蛋白質。然后濃縮,透析,加入4倍體積的乙醇沉淀多糖,將沉淀凍干。
    取樣品0.1g溶于10ml 0.01mol/L Tris-HCL, PH=7.2的平衡緩沖液中。上樣,用Buffer A: 0.1mol NaCl, 0.01 mol Tris-HCl PH=7.2; Buffer B: 0.5mol NaCl, 0.01 mol Tris-HCl PH=7.2 進行線性洗脫,分部收集。各管用硫酸苯酚法檢測多糖。合并多糖高峰部分,濃縮后透析,凍干,即得多糖級分。

    第二部分多糖的鑒定
    目的要求
    (1)了解薄層層析法分析單糖組分的原理和方法。
    (2)了解紅外光譜法鑒定多糖的原理和方法。
    實驗原理
    采用薄層層析法分析單糖組分。薄層層析顯色后,比較多糖水解所得單糖斑點的顏色和Rf值與不同單糖標樣參考斑點的顏色和Rf值,確定樣品多糖的單糖組分。
    多糖的分析鑒定一般借助于氣相色譜(GC)、高效液相色譜(HPLC)、紅外光譜 (IR)和紫外光譜(UV)等技術,氣相(液相)色譜—質譜(GC/HPLC—MS)聯用技術成為分析多糖更為有效的手段。
    本實驗利用紅外光譜對多糖進行鑒定。多糖類物質的官能團在紅外譜圖上表現為相應的特征吸收峰,我們可以根據其特征吸收來鑒定糖類物質。0—H的吸收峰在3650—3590cm-1,C—H的I申縮振動的吸收峰在2962—2853cm-1,C=O的振動峰為1510 —1670-1之間的吸收峰,C—H的彎曲振動吸收峰為1485—1445cm-1,毗喃環結構的C—0的吸收峰為1090cm-1。
    試劑和器材
    一、試劑
    濃硫酸,氫氧化鋇。
    展開劑:正丁醇:乙酸乙酯:異丙醇:醋酸:乙醇:水:吡啶=7:20:12:7:6:6。
    顯色劑:1,3-二羥基萘硫酸溶液(0.2%1,3-二羥基萘乙醇溶液):濃硫酸=1:0.04(V/V)。
    單糖標準品。
    二、器材
    沸水浴, 玻璃板,傅里葉變換紅外光譜。
    操作方法
    一、單糖組分分析
    1.薄層板制備:稱取硅膠5g于50ml燒杯中,加入用 12 mL 0.3mol/L 磷酸二氫鈉水溶,用玻璃棒慢慢攪拌至硅膠分散均勻,鋪在玻璃板上(7.5cm×10cm),110℃活化1h。即置有干燥劑的干燥箱中備用。
    2.點樣:稱取少許的多糖(0.1克)于2.0mL離心管中,加入1M的硫酸1mL,沸水浴水解2h,然后加氫氧化鋇中和至中性,過濾除去硫酸鋇沉淀,得多糖水解澄清液。以此水解液和單糖標準品進行點樣進行薄層層析展開。用點樣器點樣于薄層板上,一般為圓點,點樣基線距底邊2.0cm,點樣直徑為2—4mm,點間距離約為1.5—2.0cm,點間距離可視斑點擴散情況以不影響檢出為宜。點樣時必須注意勿損傷薄層表面。
    3.展開:展開室如需預先用展開劑飽和,將點好樣品的薄層板放入展開室的展開劑中,浸入展開劑的深度為距薄層板底邊0.5—1.0cm(切勿將樣點浸入展開劑中),密封室蓋,等展開至規定距離(一般為10—15cm),取出薄層板,晾干。
    4.顯色:將展開涼干后的薄板再在100℃烘箱內烘烤30分鐘,將顯色劑均勻地噴灑在薄板上,此板在110℃下烘烤10分鐘即可顯色。
    薄層顯色后,將樣品圖譜與標準樣圖譜進行比較,參考斑點顏色、相對位置及Rf值,確定樣品中有哪幾種糖。
    二、紅外光譜在多糖分析上的應用
    將凍干后的樣品用KBr壓片,在4000~400cm-1區間內進行紅外光譜掃描,有如下的多糖特征吸收峰:3401 cm-1(O-H),2919 cm-1(C-H), 1381 cm-1及1076 cm-1(C-O)。在900 cm-1處的吸收峰說明該多糖以β-糖苷鍵連接。在N-H變角振動區1650-1550cm-1處有明顯的蛋白質吸收峰,表明該樣品是多糖蛋白質復合物。


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