SDS 平板膠片鑄造︰

1） 整理出兩組玻璃片及白板鑄膠組合，先用酒精拭凈，并選擇合適的間隔條（0.75 mm） 組合起來。請熟悉鑄膠三明治組合的正確組裝方式，以免灌入的膠液漏出來。

2） 三明治組合后直立站好，準備所要濃度的SDS 膠體溶液如表4.2. 兩片0.75mm 厚的平板膠片約需10 mL 分離膠體溶液，以及5 mL 焦集膠體溶液。APS液到最后才加入，未加APS 以前可在真空中抽去溶液中的氣體。

配制兩片0.75 mm 膠片所需膠體 （mL）

3） 以上分離膠體各成份在小燒杯中混合均勻后，可直接沿著玻璃一側倒入鑄膠組合到預定高度 （約八成高），勿陷住氣泡；再輕輕加上一層isopropanol. 也可使用滴管慢慢加入膠體，同樣勿注入氣泡。

4） 約30 min 可凝結，以濾紙吸去isopropanol,同法倒入焦集膠體溶液，要加到滿；盡快插入樣品槽齒模，注意不可有氣泡陷在膠體中。一般在凝膠完成后，膠體與所加的水層的間，會出現清楚的直線界面，但因為背景為白色，較不易觀察的。

5） 再度凝結后取下齒模即可使用。若不立刻使用，則把整個膠片組合用保鮮膜包好，膠面上方加一水層，勿使干掉，在4℃約可放1~2 周。

電泳方法︰

6） 若膠片組合保存于4℃，則要等待膠片完全回復室溫，才架到電泳槽。膠片一定要完全回溫，否則在進行電泳時，玻璃會因熱脹而破裂。

7） 取F液稀釋成一倍溶液，并加SDS成為0.1%;先倒入下方的正極槽，注意不可有氣泡黏在膠體，然后倒入上方的負極槽。用微量針筒或微量移液器一個一個清洗樣本槽，除去殘留在槽內的膠體 （刷牙）。刷牙的動作很重要，而且要徹底，否則注入樣本時，會有大麻煩。又因為白色氧化鋁板乃白色背景，不容易看出樣本槽的位置，可用Hoefer 所附的透明樣本槽位置模板，作為指引，順便可練習樣本添加的動作。

8） 取蛋白質樣本溶液，加入同體積E 液，以及適量追蹤染料bromophenol blue,混勻后在100℃加熱10 min.放冷短暫離心后即可依次以微量移液器注入樣本槽，樣本體積可自斟酌，但要記好位置及體積；通常都使用5~15uL.注入樣本時，盡量把針頭或吸管伸到樣本槽底部，但不要觸到樣本槽底的膠面，則可以使得樣本所占的體積最小，分離效果較好。

9） 裝上電源蓋，以100~150 V進行電泳，最高可加至200 V,視實驗的緊急程度，以及膠片發熱的情形而定。通電后兩極附近會立刻產生無數細微氣泡，是通電的特征。

10） 追蹤染料很快進入膠體，開始焦集成藍色細線，并向下泳動，大約1 h 可泳動到底邊，中止電泳，除去電源蓋。有些分子量較大的樣本，或使用濃度較高的膠片，可以等到藍色細線泳出膠體才停止。

膠片染色法：

11） 取出膠片組合，使玻璃板向上，先除去兩側間隔條，再以扁形藥匙輕輕撬起玻璃，膠片則留在白板上。切除焦集膠體，并在分離膠片的右上方截角做記號 （區別膠片的左右）。