小鼠、豚鼠、家兔的抓取、固定和處死

【實驗目的】

1. 掌握常用實驗動物的抓取、固定和處死方法。

2. 了解動物實驗的重要意義。

【實驗器材】

1. 動物：小鼠、豚鼠、家兔

2. 固定架、注射器、一次性無菌橡膠手套、帆布手套

【實驗方法】

（一）小鼠的抓取固定和處死

1. 小鼠的抓取固定方法

小鼠抓取時先用左手抓取鼠尾向后拉，在其向前爬行時，用右手拇指和食指抓住小鼠的兩耳和頸部皮膚，其余三指抓住背部皮膚，將鼠體置于右手心中，左手抓取鼠尾向后拉并以右手無名指按住鼠尾。這種固定方式可進行灌胃、皮下、肌肉和腹腔注射等操作。

如進行尾靜脈注射時，可用小鼠尾靜脈注射架固定，先根據動物大小選擇好合適的固定架，并打開鼠筒蓋，手提鼠尾巴，讓動物頭對準鼠筒口并送入筒內，調節鼠筒長短合適后，露出尾巴，固定筒蓋即可進行尾靜脈注射或尾靜脈采血等操作。 2. 小鼠的處死方法

（1）頸椎脫臼（斷頸）處死法：小鼠常用的處死方法是頸椎脫臼（斷頸）處死 法。此法是將實驗動物的頸椎脫臼，斷離脊髓致死，為小鼠最常用的處死方法。操作 時實驗人員用右手抓住鼠尾放在實驗臺面上，用左手拇指、食指用力向下按壓鼠頭及 頸部，右手抓住鼠尾根部用力拉向后上方，造成頸椎脫臼，脊髓與腦干斷離，小鼠立 即死亡。

（2）斷頭處死法：實驗人員用左手按住實驗動物的背部，拇指夾住實驗動物右腋窩，食指和中指夾住左前肢，右手用剪刀在鼠頸部垂直將鼠頭剪斷，使實驗動物因腦脊髓斷離且大量出血死亡。

（3）擊打頭蓋骨處死法：操作時抓住實驗動物尾部并提起，用木錘等硬物猛烈打擊實驗動物頭部，使大腦中樞遭到破壞，實驗動物痙攣并死亡。

（4）急性大失血法：可采用鼠眼眶動脈和靜脈急性大量失血方法使鼠立即死亡。

（5）化學致死法：吸入一氧化碳，小鼠在一氧化碳濃度為0.2～0.5%環境中即可致死。皮下注射士的年，吸入乙醚、氨仿，均可致死。士的年注射量，小鼠為0.76～2.0mg/kg 體重。