一、實驗動物的用藥途徑及方法

動物給藥的途徑和方法可根據動物種類、實驗目的和藥物而定，常用的方法簡介如下。

（一）經口給藥

有口服與灌胃兩種方法。口服法可將藥物放入飼料或溶于飲水中，使動物自行攝取。為保證劑量準確，應使用灌胃法，適用于小白鼠、大白鼠及家兔等動物。

1. 小鼠、大鼠（或豚鼠）灌胃時將灌胃針安在注射器上，吸入藥液。左手抓住鼠背部及頸部皮膚將動物固定，右手持注射器，將灌胃針插入動物口中，用灌胃針管壓其上腭，使口腔和食道成一條直線，再沿咽后壁徐徐插入食管。針插入時應無阻力。若感到阻力或動物掙扎時，應拔出重插，以免損傷或穿破食管以及誤入氣管。

一般當灌胃針插入小鼠3～4cm，大鼠或豚鼠4～6cm后可將藥物注入。常用的灌胃量小鼠為0.2～1ml，大鼠1～4ml，豚鼠為1～5ml。

2. 猴、狗、貓、兔 灌胃時，先將動物固定，用特制的擴口器放入動物口中，并用繩將它固定于嘴部。將帶有彈性的橡皮導管（如導尿管），經擴口器上的小圓孔插入，沿咽后壁而進入食管。此時應檢查導管是否插入食管，可將導管外口置于一盛水的燒杯中，如不發生氣泡，即認為此導管是在食管中，即可將藥液灌入。灌胃完畢后，先拔出導尿管，再取下張口器。

各種動物一次灌胃能耐受的最大容積根據體重大小而不同：小鼠為0.5～1.0ml，大鼠為3～7ml，豚鼠為4～6ml，家兔為80～150ml，狗為200～500ml。

（二）注射給藥

1. 皮下注射　皮下注射給藥是將藥液推入皮下結締組織，經毛細血管、淋巴管吸收進入血液循環的過程。注射時，常規消毒注射部位皮膚，用左手拇指和食指提起皮膚，注射針頭取一鈍角角度刺入皮下，將針頭輕輕向左右擺動，易擺動則表示已刺入皮下，再輕輕抽吸，如無回血，可緩慢地將藥物注入皮下。

拔針時左手拇、食指捏住進針部位片刻，以防止藥物外漏。皮下注射部位一般大白鼠在側下腹部；豚鼠在后大腿內側或小腹部；兔在背部或耳根部注射；狗、貓多在大腿外側；蛙可在脊背部淋巴腔注射。

2. 皮內注射　是將藥液注入皮膚的表皮與真皮之間。此法可用于觀察皮膚血管的通透性變化或皮內反應，多用于接種、過敏實驗等。操作時須將注射的局部脫去被毛，常規消毒后，用左手拇指和食指按住皮膚并使之繃緊，在兩指之間，用注射器連4號小針頭，緊貼皮膚表層刺入皮內，然后再向上挑起并再稍刺入，即可注射藥液，皮膚表面此時可見一白色小皮丘。

3. 肌肉注射　一般多選用臀部或股部肌肉發達、無大血管通過的部位，注射時將針頭迅速刺入肌肉，回抽無回血，即可進行注射。給大白鼠、小白鼠等小動物作肌肉注射時，用左手抓住鼠兩耳和頭部皮膚，右手取連有5號針頭的注射器，將針頭刺入大腿外側肌肉，將藥液注入。

4. 腹腔注射　常用于大鼠或小鼠給藥。用左手捕捉固定動物，使腹部向上，鼠頭略低于尾部，右手將注射針頭自下腹部靠近腹白線的兩側刺入皮下，使針頭向前推0.5～ 1.0cm，再以45°角穿過腹肌，緩緩注入藥液。為避免傷及內臟，可使動物處于頭低位，使內臟移向上腹。若實驗動物為家兔，進針部位為下腹部的腹白線離開1cm處。

5. 靜脈注射

（1）狗：狗靜脈注射多選用前肢內側頭靜脈或后肢小隱靜脈，注射前應先剪去注射部位的被毛，用膠帶扎緊靜脈近心端，使血管充盈，針尖自遠心端刺入血管，有回血后，固定針頭，徐徐注入藥液。

（2）家兔：一般選用外側耳緣靜脈。注射前應先拔去注射部位的被毛，用手指輕彈或輕揉兔耳，左手食指與中指夾住靜脈的近心端，阻止靜脈回流，使靜脈充盈，用拇指和無名指固定耳緣靜脈遠心端，右手持針盡量從遠端刺入，回抽有回血后用左手拇指固定針頭，放開食指和中指，將藥液注入。

（3）小鼠和大鼠：一般采用尾靜脈注射，鼠尾靜脈有3根，兩側及背側各一根，左右兩側尾靜脈較易固定，應優先選擇。注射前先將動物固定在鼠筒或玻璃罩內，使鼠尾露出，在45℃～50℃熱水中浸泡，或用酒精擦拭，使血管擴張。

用拇指和食指捏住尾根部，再以無名指和小指夾住尾端部，用中指從下托起尾巴固定，右手持注射器連4號細針頭，從尾下1/4處進針，如針確已在靜脈內，則注藥無阻，否則局部發白隆起，應拔出針頭再移向前方靜脈部位重新穿刺。

（4）蛙類：將蛙腦脊髓破壞后仰臥位固定于蛙板上，沿腹中線稍左剪開腹肌翻轉，可見腹靜脈緊貼腹壁肌肉下行，將針刺入即可。

6. 淋巴囊注射　蛙類皮下有數個淋巴囊，是蛙的給藥常用途徑，注射時應從口腔底部刺入肌層，再進入胸皮下淋巴囊注藥，抽針后藥液才不易流出。

此外，根據實驗內容的不同還可采取呼吸道給藥、皮膚給藥、脊髓腔內給藥、小腦延髓池給藥、直腸內給藥、關節腔內給藥。

二、實驗動物的取血方法

（一）大鼠、小鼠

1. 尾部取血　可采用針刺尾靜脈和剪尾尖兩種方法。

（1）針刺尾靜脈：先固定動物，用酒精棉球消毒尾部，然后對準尾尖部向上數厘米處的靜脈用注射針刺入后立即拔出。采血后用局部壓迫、燒烙等方法進行止血。

（2）剪尾尖：將動物固定或麻醉后，露出鼠尾，將尾巴置于45℃～50℃熱水中浸泡數分鐘，使血管擴張。擦干鼠尾后，將尾尖剪去1～2mm（小鼠）或5mm（大鼠）。從尾根部向尾尖部按摩，血即從斷端流出。

2. 眼部取血　可采用眼球后靜脈叢取血法。用7號針頭連接1ml的注射器或10ml長玻璃管（一端燒制拉成直徑1～1.5mm的毛細管）。取血時左手抓住鼠兩耳之間的皮膚使頭固定，輕輕壓迫頸部兩側，阻礙頭部靜脈回流，使眼球充分外突，球后靜脈叢充血。

右手持注射器或玻管，將其插入內眥部，向眼底方向旋轉插入。插入深度：小鼠為2～3mm，大鼠為4～5mm。因血壓關系，血液自行流入管內，拔出針頭或玻管，放松左手。為防止穿刺孔出血，可用紗布壓迫眼球，達到止血目的。數分鐘后可在同一穿刺孔重復取血。小鼠一次可采得血0.2ml，大鼠0.5ml。

3. 大血管取血　可采用頸動（靜）脈、股動（靜）脈、腹主動脈等方法取血。在這些部位取血均須麻醉后固定動物，然后作動（靜）脈分離手術，使其充分暴露，用注射器沿大血管平行方向刺入，抽取所需血量。或直接用剪刀剪斷大血管吸取，但切斷動脈時，要防止血液噴濺。

4. 心臟取血　先將動物仰臥固定，左手食指在左側第3～4肋間觸到心尖搏動最強處，右手用連有針頭的注射器在此穿刺。由于心臟跳動血液進入注射器。小鼠約0.5～0.6ml，大鼠約0.8～1.2ml。

5. 斷頭取血　這需要二人配合操作，采血者用左手將大（小）鼠的頭頸部握緊，右手抓住軀干和后肢，將頸部暴露。助手用剪刀將鼠頸剪斷（用力要大），采血者應迅速將大（小）鼠倒置，讓血滴入容器。此方法用于實驗結束后血液采集量大時。

（二）豚鼠

1. 耳緣剪口采血　將耳消毒后，用銳器割破耳緣，在切口邊緣涂抹20%枸櫞酸鈉溶液，阻止血凝，則血可自切口自動流出，進入盛器。操作時，使耳充血效果較好。此法能采血0.5ml左右。

2. 心臟采血　取血前應探明心臟搏動最強部位，通常在胸骨左緣的正中，選心跳最明顯的部位作穿刺。針頭宜稍細長些，以免發生手術后穿刺孔出血。因豚鼠身體較小，一般可不必將動物固定在解剖臺上，而可由助手握住前后肢進行采血。成年豚鼠采血應不超過10ml為宜。

3. 股動脈采血　將動物仰位固定在手術臺上，減去腹股溝區的毛，麻醉后局部用碘酒消毒。切開長約2～3cm的皮膚，使股動脈暴露及分離，然后用鑷子提起股動脈，遠端結扎，近端用止血鉗夾住，在動脈中央剪一小孔，用無菌玻璃小導管或聚乙烯、聚四氟乙烯管插入，放開止血鉗，血液既由導管流出。一次可采血10～20ml。

4. 背中足靜脈取血　固定動物，將其右或左后關節伸直，將動物腳背面用酒精消毒，找出背中足靜脈后，一手拉住豚鼠的趾端，一手用注射器刺入靜脈。拔針后立即出血，呈半球狀隆起。采取后應壓迫止血。

（三）家兔

1. 耳部取血　可采用耳緣靜脈或耳中央動脈取血。首先拔去血管表面皮膚的毛，輕揉兔耳或用酒精涂抹皮膚使血管擴張。用注射器可從耳中央動脈抽取數毫升血。也可用針頭刺破耳緣靜脈末梢取血。

2. 大血管取血　可采用頸靜脈、股靜脈和后肢小隱靜脈取血。

（1）頸靜脈和股靜脈取血：首先麻醉做血管分離術。然后用注射器沿血管方向刺入抽取血液。

（2）后肢小隱靜脈取血：首先使動物仰臥然后固定，在小腿上端扎橡皮管，小腿外側皮下可見充盈的靜脈，經皮穿刺可以取血。

3. 心臟取血　在第三肋間胸骨左緣3mm心臟搏動最強處，將針頭垂直刺入心臟，血即進入注射器。一次可取血20～25ml。

（四）狗和貓

1. 耳緣靜脈取血　采血量較少時可用此法。用針頭刺破靜脈采血或直接用空針抽取。

2. 前、后肢靜脈取血　前肢選用內側皮下頭靜脈，位于前肢前部，在下1/3處向內側走行；后肢選用外側的隱靜脈，位于跗關節外側，距跗關節上方5～10cm處的皮下，由前斜向后上方走行。采血時，先將狗固定，用止血帶扎住穿刺部位的上方，使靜脈充盈。操作者手持注射器采血。

3. 頸靜脈取血　此方法可取較多的血。先將狗麻醉固定，固定時將頸部盡量后仰，助手用手壓住頸靜脈入胸部的皮膚，使靜脈怒張。操作者用左手繃緊進針部位的皮膚，右手拿注射器沿血管向心端刺入。采血后應注意止血。

還可從狗的心臟或股動、靜脈采血。但技術要求較高，不容易成功，除非有特殊要求，否則可選用以上三種方法。

貓的取血方法與狗基本相似，可采用前肢皮下頭靜脈、后肢股靜脈、耳緣靜脈取血。采血量較大時，可從頸靜脈抽取。