一、蛋白質SDS-PAGE電泳 1、安裝垂直板電泳裝置 用洗潔精、清水和無水乙醇清洗兩塊玻璃板，晾干后安裝。 2、制備SDS-聚丙烯酰胺凝膠 （1）配制9%分離膠（15ml）：雙蒸水6.55ml，1.5M Tris-HCl（pH8.8）3.75ml，30%丙烯酰胺儲存液（Acry/Bis）4.5ml，10%SDS 150ml，10%過硫酸銨（APS）50ml，混勻后加入3.75ml TEMED，立即混勻，灌入裝好的垂直板中，至距離短玻璃頂端約2cm處。檢查是否有氣泡，如果有，用濾紙條吸出。在膠液上面加一層雙蒸水，靜置，待凝膠與水的界面清晰時，說明分離膠已聚合（約30分鐘），去除水相，用濾紙吸干殘存的液體。 （2）配制4%濃縮膠（10ml）：雙蒸水6.1ml，0.5M Tris-HCl（pH6.8）2.5ml，30%丙烯酰胺儲存液（Acry/Bis）1.3ml，10%SDS 100ml，10%過硫酸銨（APS）50ml，混勻后加入10ml TEMED，立即混勻，灌入垂直板中至短玻璃頂端，插入梳子，避免產生氣泡，靜置，約60分鐘后，膠聚合，拔去梳子，用電極緩沖液沖洗加樣孔，以去除未聚合的丙烯酰胺。 （3）將凝膠固定在電泳槽中，上下槽各加入1′Tris-甘氨酸電泳緩沖液，驅除兩玻璃板間凝膠底部的氣泡。 3、樣品處理及上樣 在Ependorf管中加入蛋白提取液16ml，5×上樣緩沖液4ml，充分混勻，與蛋白分子量標準一起放在100°C沸水中煮5分鐘后，用微量加樣器上樣。為了便于比較蛋白電泳結果和免疫印跡結果，采取對稱加樣。 4、電泳 將電泳裝置接通電源。開始電泳時，電壓為80V，當樣品進入分離膠后，將電壓調到150V。繼續電泳至樣品前沿抵達分離膠底部，斷開電源。 二、蛋白質印跡免疫分析（Western Blot） 1、蛋白質轉膜 （1）取下膠板，小心去除一側玻璃板，切去濃縮膠和分離膠無樣品的部分，將凝膠分成兩半，含分子量標準的部分用考馬斯亮藍染色。 （2）精確測量剩余膠的大小，按該尺寸剪取一張硝酸纖維素膜和兩張濾紙（BioRad專用），在轉移緩沖液中將膜和濾紙浸泡15分鐘。 （3）海綿在轉移緩沖液中充分浸濕。 （4）用于轉膜的凝膠放在轉移緩沖液中洗滌。 （5）打開蛋白質轉移槽夾板，按下列順序依次安放： a.浸濕的海綿 b.用轉移緩沖液飽和的濾紙 c.凝膠 d.硝酸纖維素膜 e.用轉移緩沖液飽和的濾紙 f.浸濕的海綿 在每放一層的時候，都要沖加轉移緩沖液，小心地趕走每層之間的氣泡。 （6）小心合上夾板，放入轉移槽中，倒入轉移緩沖液，加冰塊。 （7）插入電極，注意正負極的方向，將電泳儀調至150mA，轉移2小時。 2、封閉 ：將轉移后的硝酸纖維素膜放在TBS緩沖液中，漂洗5分鐘，然后膜的正面朝上，放在裝有封閉液的平皿中，室溫輕搖30分鐘。 3、一抗結合將硝酸纖維素膜放入雜交袋中，封好三面，按0.1ml/cm2加入封閉液和小鼠抗人p53蛋白的單克隆抗體（1:400稀釋），驅趕氣泡，封嚴雜交袋，膜的正面朝上，放在搖床上，4°C輕搖過夜。 4、二抗結合 剪開雜交袋，取出硝酸纖維素膜，用TTBS漂洗3次，每次5分鐘。再將膜放入雜交袋，封好三面，按0.1ml/cm2加入封閉液和堿性磷酸酶偶聯的山羊抗小鼠IgG（1:500稀釋），驅趕氣泡，封嚴雜交袋，膜的正面朝上，放在搖床上，室溫下輕搖2小時。 5、顯色反應 取出膜，用TTBS漂洗3次，每次5分鐘。按BCIP:NBT:稀釋液=1:1:50的比例配制顯色液（其中，稀釋液在使用前，先用 蒸餾 水將濃縮的稀釋液一次性稀釋為工作液，密封4°C保存），混勻后立即將顯色液和膜封入雜交袋中，置暗處反應，待顯色反應達到最佳程度時，取出膜，用 蒸餾 水漂洗終止反應，晾干后封入塑料袋中保存。 6、照相保存結果進行分析